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犬瘟热病毒(CDV)核酸检测试剂盒说明书

更新时间:2026-11-09点击次数:4


犬瘟热病毒(CDV)核酸检测试剂盒(荧光PCR 法)

【产品名称】

商品名称:犬瘟热病毒(CDV)核酸检测试剂盒(荧光 PCR法)

Name:Canine Distemper Virus Detection Kit (Real-Time PCR Method)

【包装规格】25T/盒、50T/盒

【预期用途】

犬瘟热是由犬瘟热病毒(CanineDistemperVirus,CDV)引起的一种急性、高度接触性传染病。该病广泛分布于世界各地,是当前危害犬群最严重的疫病之一,对其它犬科动物、鼬科动物和猫科动物也具有较大危害。CDV感染临床症状,根据病毒种属、环境因素以及个体对感染的反应不同而轻重不同。临床症状主要局限于上呼吸道,所以咳嗽、流鼻涕会很明显。未经免疫的幼犬很可能出现严重症状,如肺炎、腹泻、脱水、厌食等[1]。犬瘟热的传染性极qiang,且发病率高,常常可引起大批量的犬、貂、狐及部分野生动物发病,致死率可达30%-80%,给毛皮动物产业和野生动物保护业造成了重大经济损失。目前,本病缺乏特xiao的治疗方法,早期诊断及早使用抗血清是治疗该病的重要措施。

本试剂盒适用于检测的犬肝、脾、肺等组织、血液、血清、泪液、鼻液、唾液、粪便等标本中犬瘟热病毒RNA,适用于犬瘟热病毒感染的辅助诊断。其检测结果仅供参考。

【检验原理】

本试剂盒采用 TaqMan 探针法实时荧光 PCR技术,设计一对犬瘟热病毒特异性引物,结合一条特异性探针, 用荧光 PCR技术对犬瘟热病毒的 RNA进行体外扩增检测,用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。

【试剂组成】

包装规格25T/盒50T/盒
CDV 反应液500μL \times 1管500μL \times 2管
酶液25μL \times 1管50μL \times 1管
CDV 阳性质控品250μL \times 1管250μL \times 1管
阴性质控品250μL \times 1管250μL \times 1管

说明:不同批号的试剂盒组分不可交互使用。

【储存条件及有效期】

-20℃±5℃,避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次,有效期 12个月。

【适用仪器】

ABI7500 、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf等系列荧光定量 PCR 检测仪。

【标本采集】

病死犬可采集肝、脾、肺、等组织;活犬可采集血液、血清、泪液、鼻液、唾液、粪便。

【保存和运输】

采集或处理好的样品在 2℃~8℃条件下保存应不超过 24h;若需长期保存,应放置-70℃以下保存,冻融不 超过 3 次。

【使用方法】

1. 样品处理(样本处理区)

1.1 样本前处理

将待检组织或粪便样品加等体积生理盐水研磨匀浆,3000g 离心15min,收集上清液待检。口腔拭子、粪拭子用少量生理盐水浸润后,取上清液待检。经细胞病原分离培养的样品,收集细胞沉淀待检。

1.2 核酸提取

采用核酸提取或纯化试剂(磁珠法或离心柱法)进行核酸提取,请按照试剂说明书进行操作。

2. 试剂配制(试剂准备区)

根据待检测样本总数,设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1管阴性对照+1 管阳性对照;样品每满 10 份,多配制 1份),每测试反应体系配制如下表:

试剂CDV 反应液酶液
用量(样本数为 N)19μL1μL

将混合好的测试反应液分装到 PCR 反应管中,20μL/管。

3. 加样(样本处理区)

将步骤 1 提取的核酸、阳性质控品、阴性质控品各取5μL,分别加入相应的反应管中,盖好管盖,混匀, 短暂离心。

4. PCR扩增(核酸扩增区)

4.1 将待检测反应管置于荧光定量 PCR仪反应槽内;

4.2 设置好通道、样品信息,反应体系设置为 25μL;

荧光通道选择: 检测通道(Reporter Dye)FAM, 淬灭通道(QuencherDye)NONE,ABI 系列仪器请勿选择 ROX 参比荧光,选择None 即可。

4.3 推荐循环参数设置:

步骤循环数温度时间收集荧光信号
11 cycle50°C10min否
21 cycle95°C2min否
345cycles95°C15sec否
60°C30sec是

5. 结果分析判定

5.1 结果分析条件设定(请参照各仪器使用说明书进行设置,以分析 ABI7500仪器为例)

反应结束后自动保存结果,根据分析后图像调节 Baseline的 Start 值、End值以及 Threshold 值(用户可根据实 际情况自行调整,Start 值可设在3~15、End 值可设在 5~20,使阈值线位于扩增曲线指数期,阴性质控品的扩增曲线平直或低于阈值线),点击 Analyze 自动获得分析结果。

5.2 结果判断

阳性:检测通道 Ct 值≤40,且曲线有明显的指数增长曲线;

阴性:样本检测结果无Ct 值,且无特异性扩增曲线;

可疑:样本检测结果 40<Ct 值≤45,建议重复检测,如果检测通道仍为40<Ct 值≤45,且曲线有明显的增长 曲线,判定为阳性,否则为阴性。

5.3 质控标准

阴性质控品:无特异性扩增曲线或无 Ct 值显示;

阳性质控品:扩增曲线有明显指数增长期,且 Ct 值≤32;

以上条件应同时满足,否则实验视为无效。

6. 检测方法的局限性

1.样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关;

2.样本提取过程中没有控制好交叉污染,会出现假阳性结果;

3.阳性对照、扩增产物泄漏,会导致假阳性结果;

4.病原体在流行过程中基因突变、重组,会导致假阴性结果;

5.不同的提取方法存在提取效率差异,会导致假阴性结果;

6.试剂运输,保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降,出现假阴性或定量检测不准确的结果;

7.本检测结果仅供参考,如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。

【注意事项】

1.所有操作严格按照说明书进行;

2.试剂盒内各种组分使用前应自然融化,完quan混匀并短暂离心;

3.反应液应避光保存;

4.反应中尽量避免气泡存在,管盖需盖紧;

5.使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服;

6.样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行,以免交叉污染;

7.实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器;

8.试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

热线电话:17317792356

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